蛋白質分子量為20多的跑sds page分離膠的電壓大約是多少

2025-06-20 23:00:18 字數 2892 閱讀 8317

1樓:匿名使用者

也可以用,就是濃度略低了點,推薦分離膠的濃度一般是按照要分離的蛋白的分子量範圍決定的,10-80kda的建議14% 20-150kda的建議12% 30-200kda的建議10% 根據這樣的推薦來看,30是分離下限了,所以這個分離膠的濃度略低,可以試試12%或者15%的。

小分子量蛋白該怎麼跑sds-page

2樓:網友

可以適當提高sds-page濃度,或是根據情況縮短電泳的時間。

sds-page上樣量多少合適? 分子量20kda左右 ,應該用多大濃度的分離膠?15%我試過了,總是跑不開

3樓:網友

請問你的跑不開是怎樣的,我之前做過一次是marker和樣品都只在分離膠的上半部分分開,下半部分完全沒有分開,都看不到marker的條帶。

4樓:伍靈凡

15%的膠應該是沒問題的,跑的時間長一些,距離長一些就能跑開。上樣量得看你蛋白的表達量,一般15-30μg就應該沒有問題,不過選用β-actin做對照,建議用另一塊12%的膠跑β-actin,這樣可以使目的蛋白和對照條頻寬度大概一致。

5樓:網友

可以試一下小分子膠,不過也15%沒有問題。上樣量影響不大,看你的樣品濃度上樣。

6樓:網友

跑不開?考染? 如果是抗體雜的話不存在跑不開的問題吧 跑的久點。。。或者用大膠跑 如果你們那有人會弄的話。

8kda蛋白在sds-page電泳時分離膠的濃度該選擇多大

7樓:北京索萊寶科技****

聚丙烯醯胺凝膠濃度與蛋白質分離範圍的關係:

聚丙烯醯胺凝膠濃度/% 蛋白質分離範圍/kd

濃縮膠濃度低;分離膠濃度高於濃縮膠,一般不小於5%。

8kd的蛋白質可能就要用tricine–sds-page系統,因為濃縮膠和分離膠濃度太大,電泳速度很忙,很可能引起電泳帶彌散。

sds-page的電壓問題,求教

8樓:網友

兩層膠,也就是濃縮膠和分離膠。

在理論上來說最好是電壓不一樣,濃縮膠小一些一般是50~90v,分離膠大一些一般是120~200v

但是就實際操作來說,如果需要處理大量的sds-page,並不需要嚴格的控制電壓。一般可以200v恆壓直接跑完,實際效果並不會特別差。

跑western時不同濃度的分離膠對跑蛋白的影響

9樓:匿名使用者

如果膠濃度不同,蛋白在其中遷移的速率就不一樣,所以如果採用裁膜的方式,對於蛋白遷移的位置要事先有個預判。10%的膠,濃度高,遷移慢一些,如果都在相同位置裁,這裡看到條帶,6,8%的膠,膜需要裁得更靠下緣。或者把之前裁掉的膜的下半部分再拿來做做實驗試試。

當然,電泳時的各種因素也會有影響,但是如果其他配置完全一樣,就是膠濃度變化了的話,上述原因是需要考慮的。

sds-page蛋白電泳配膠不凝固

10樓:網友

我分析原因是過硫酸胺失效,過硫酸氨最好是先用現配,如果怕麻煩而且跑膠的頻率很高的話,那麼用完之後ap要放在4℃儲存,一週之後必須新配。另外可以適當的增加temed的量,從5μl提高到8μl並無大礙。

如你所說,是不是就是ap失效呢,還有,我強烈建議你複查一邊濃縮膠,分離膠各各buffer的組分是否配製有誤,特別是ph,另外,現在氣溫上公升,原來冬天配製的溶液的ph和現在可能會相差很多,建議複查,如果ph不對,重新配過。一般情況下,對於ph有要求的溶液,季節更換的時候,基本要重新配過的。原來以貯存液形式存在的溶液,在稀釋用作工作液的時候,也要特別注意ph

11樓:***

分離膠30分鐘左右凝固有點慢,可能ap配製時間過長。多加點試試。

12樓:網友

1,多加過硫酸銨試試。

2,多加點temed,可加速凝固。

3,配好膠後放在溫箱裡凝的快些,環境溫度低會影響凝的速度。我在冬天會灌好膠後放在培養箱裡,一般很快就凝了,可以提高效率,一天最多可以跑5次。

最後,經常出現濃縮膠凝但不成形,非常粘,這是因為c液(濃縮膠緩衝液)的ph值不對,重新配製c液。

做了四年蛋白電泳實驗,不凝是是最初發生的問題,基本按以上思路解決的,以後再沒遇見過,但也不排除我能力範圍之外的沒想到的因素。

13樓:網友

過硫酸氨最好現配,4度儲存最多7天。

14樓:吉念桃

這麼專業的問題在這裡問,你肯定是得不到答案的,查專業書靠得住些。

15樓:曾

多加temed是正確的。

加標準值的兩倍。

小分子蛋白用20%分離膠可以跑出來嗎

16樓:匿名使用者

膠濃度與蛋白大小,是經過前人多次電泳的經驗總結。在最佳的電泳條件下,能得到比較好的分離效果和比較好看的條帶。

如果膠濃度夠大,蛋白條帶會比較細一些,但電泳速度比較慢,大的片段可能分不開。

10%能不能用得看你的情況了。如果只是乙個條帶,用10%是沒有問題的。如果有些雜帶,而且雜帶與你的目標蛋白差得比較遠,也是可以用的。

如果差別小,那就得用濃度低一點的膠了,這樣才能分開。

凝膠過濾和sds-page這兩種分離蛋白質的方法均建築在分子大小的基礎上,為什麼

17樓:小小微生物

凝膠過濾,分子小的先流穿,分子大的被截留。

sds-page,分子小的跑的快,分子大的跑的慢。

都是 通過分子大小來達到分離效果的。

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