1樓：世名頂點科技
有可能是以下原因：
1、電壓過大；2、緩衝溶液調子濃度過高；3、梳子深度；4上樣量過多；5、酶切不完全；6、dna發生了降解。
2樓：匿名使用者
1.電壓過大，根據電泳槽設定合適的電壓；2.緩衝溶液離子濃度過高，調整鹽濃度在以下；3.
梳子插得過深，樣品從膠板下部通過，梳子底部與膠槽應隔1-2mm（限於水平電泳）；4.上樣量過多，稀釋dna樣品濃度或者減少上樣量；5.酶切不完全，使用活性酶重新酶切；發生了降解，重新提取dna，並且加入dnase的抑制劑或者足夠量的蛋白質的變性劑。
dna拖尾現象是什麼原因
3樓：美迪拓
1 首先你的上樣量太大，可能早晨有些拖尾現象；
2 點樣孔有東西，可能是有蛋白質汙染，可以用酚氯仿抽提純化看看還有沒有；
3 右起第二個樣品，可能是rna沒有除乾淨，有rna汙染，可以用rnase處理一下；
4 最左邊乙個樣，dna明顯發生部分降解，有拖帶。
dna電泳為什麼標記的分子量大了就拖帶，什麼原因？
4樓：網友
一般大分子量是會有些拖尾，但是不會這麼嚴重。可能有以下一些原因：1、電泳電壓太高；2、緩衝液放置太久；3、凝膠質量不理想（對你這個結果而言這種可能性不太大）；4、凝膠濃度偏高。
5樓：網友
應該是大片段很容易降解吧，而且你跑的時間也挺長，所以緩衝液一般需要新的並且注意dna酶的汙染，還有個是不是上樣的濃度太高了，可以上幾何倍數稀釋的梯度試試。當然要跑大分子的話有必要降低膠的濃度。
質粒跑電泳，拖尾很嚴重，是什麼原因
6樓：北京索萊寶科技****
提純的純度不夠，就是雜質太多了。
被開啟的質粒跑的慢，完整的跑的快，建議上樣少點，避免裂的過久。
如何防止dna電泳拖尾
7樓：北京索萊寶科技****
pcr擴增有時出現塗抹帶或片狀帶或地毯樣帶。
其原因往往由於酶量過多或酶的質量差或酶的專一性不夠，dna模板量過大，dntp濃度過高，mg2 濃度過高，退火溫度過低，迴圈次數過多，模板長於3kd所引起。
減少酶量（一般以2單位taq dna聚合酶為基點，分梯度上下調一調，其他酶也差不多如此濃度，可以參考說明書）；加強dna聚合酶的專一性或調換另一**的專一性更好的dna聚合酶。
增加dna聚合酶的專一性。
1）改用專一性更強的dna聚合酶，或者使用兩種不同的dna聚合酶，減低酶量或調換另一**的專一性高的酶。更換dna聚合酶時，酶量不要太大，以免出現特異性擴增。 （2）酶製劑中的甘油可能也是干擾因素。
可以加入反應體系之前用超濾去除酶製劑中的甘油，若此操作引起酶的濃度過高，可以適當加雙蒸餾水稀釋。
3）為了加強taq dna聚合酶的專一性。 的專一性，可在反應體系中加入：的甜菜鹼或者5%的dmso可以提高pcr擴增效率，兩者可以增加taq dna聚合酶的穩定性。
適當減少dntp的濃度；減少dntp的濃度一般需要與降低mg2 濃度同方向偶聯進行，但是不必按同樣的比例。
適當降低mg2 濃 度，可以採用梯度遞減方式，以每次遞減，但是mg2 的終濃度不要低於。
縮短pcr反應的退火溫度時間或調高復性溫度。沒有重新設計引物之前，不要大範圍地變動反應體系的復性溫度，要在引物的tm少5-10度的範圍內變動。如果出現非特異性擴增，則在引物的tm少5-10度的範圍內把pcr反應的復性溫度提高1-3度。
使用梯度降低pcr。在以基因組dna為模板進行pcr擴增時，非特異性擴增較多，這時，最初的退火溫度選用比tm高5-10度。然後每隔1個迴圈，退火溫度降低1-2度，直至到達正常的tm附近的退火溫度。
採用使用專一性更強的梯度降低pcr、熱啟動pcr和巢式pcr。使用熱啟動模式。使用熱啟動時可以購買商用的pcr熱啟動酶，也可以用石蠟隔離模式。
巢式pcr也有現成的試劑盒可以購買。
保證pcr反應的dna模板的質量，要用電泳檢測一下分子量和純度，質量不好則要重新提取和純化dna模板；適當增加dna模板量，減少迴圈次數。
以上措施都不行時，最後就只能重新設計引物，加強引物的專一性。
適當減少dna模板量。
適當減少迴圈次數，一般也就迴圈25次就差不多了。
pcr產物跑的電泳，為什麼dna都有拖尾
8樓：北京索萊寶科技****
pcr產物電泳拖尾，可能有如下原因：a.模板不純。b.退火溫度偏低。c.酶量過多，dntp、mg2+濃度偏高。d.迴圈次數過多。
解決辦法：a.純化模板。b.適當提高退火溫度。c.降低酶量，適當降低dntp和鎂離子的濃度。d.減少迴圈次數。
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