1樓：葉
您好，戊二醛是一種常用的固陵皮定劑，可以用於固定細胞和組織樣本，以保持其形態和結構。然而，當使用戊二醛固定液時，出現沉澱是很常見的現象。這可能是由於戊二醛的不穩定性導致的。
如果坦汪巧出現沉澱，我們可以採取以下措施：
1. 搖勻：輕輕搖晃或旋轉樣品管，使沉澱重新分散在液體中。
2. 過濾：將樣品通過微公尺的濾膜過濾，以去除沉澱。
3. 熱解：將樣品加熱至60-70℃，使沉澱溶解。
4. 調整ph值：ph值的變化可能導致沉澱的形成。嘗試調整ph值，以使其在理想範圍內。
5. 更換固定液：如果以上方法都無法解決問題，可以考慮更讓鍵換固定液。
需要注意的是，在固定細胞和組織時，使用的固定液應該是新鮮的，避免長時間儲存導致其不穩定性增加。同時，在固定前應該清洗好樣品，以避免樣品中存在的雜質影響固定液的穩定性。
2樓：鯉魚王凱多
沉澱的產生是由於戊二醛固定液中的物質之間的相互作用和溶解度的變化所致。可採取的措施有：
一、改變ph值。可以通過改變溶液的ph值，使沉澱物的溶解度變化，從而減少沉澱的產生。
二、增李孫加溶劑濃度。可以增加溶劑的濃度，使溶質的溶解度減小，從而避免沉澱的產生。
三、增添離子交換樹脂。可以新增離子交換樹脂，使沉澱物的結晶不能形成，從而減少沉澱的產生。
四、變換溶解溫度。可以改變溶液的溫度，使沉澱物的溶解度變化，從而減少沉澱的產生。
五、加入抑制劑。可以新增一些抑制劑，使沉澱物的溶解度變化，從而減少沉澱的產生。
六、過濾。可以採用過濾方法，將沉澱物從溶液中過濾出來，從而減少沉澱的產生。
根據具體情況，可以結合哪讓鏈以上幾種措施，採取滑毀有效的措施，來減少戊二醛固定液中沉澱的產生。
3樓：網友
將取出的組織切成1mm3 大小，如果組織帶有較多的血液和組織液，應先用固定液洗幾遍，再切成小塊，然後在4℃條件下攔啟沒用牙籤或鑷子將組織塊移至盛有冷的固定液的小瓶中，固定2-4h。如不能一次性切成1mm3的大小也可以先切成稍微大點的組織塊，然後邊固定邊修成1mm3大小。實在不行的話，組織塊過大需要增加一些固定時間。
貼壁細胞：培養好的細胞棄培養基不經漂洗迅速加電鏡固定液用細胞刮輕輕刮下細胞收集到離心管內（不要用胰酶消化細胞），離心收集細胞要肉眼可見細胞沉澱芝麻至綠豆大小，棄旁盯固定液後加新的電鏡固定液室溫固定2h，再轉移至4°儲存。
懸浮細胞：離心收集細胞要肉眼可見細胞沉澱芝麻至綠豆大小，棄培養基後加電鏡固定液室溫固定2h，再轉移至4° 儲存。
戊二醛固定液 注意事項。
1. 戊二醛固定液有一定腐蝕性，請在通風環境下操作，避免吸入。
2. 組織從活體取下後應在1分鐘內放入到預冷的電鏡固定液中。操作應在低溫(0-4
下進行，可以降低酶的活性，防止細胞自溶。
3. 因為固定劑的滲透能力較弱，所簡納以取組織應不要超過1mm3。組織塊如果太大，組織塊的內部不能得到良好的固定。組織塊修切時也要在預冷的固定液中進行。
4. 取材部位要準確，機械損傷要小，解剖器械應鋒利，操作宜輕，避免牽拉、挫傷與擠壓。
5. 固定液的容量應該足夠，一般固定液與組織塊的比例應大於10:1。
6. 為了您的健康，請穿實驗服，戴一次性手套操作。
4樓：空大黃蜂
如果戊二醛固定液中有沉澱，可以嘗試以下方法：
1. 輕輕搖動液體，看旁迅看銀團沉澱是否會重新懸浮在溶液中。
2. 嘗試過濾掉沉澱，再使用上清液進行實驗。運搏此。
3. 如果以上兩種方法都無效，可以考慮重新制備新的戊二醛固定液。
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