土壤分離純化真菌失敗的原因

2025-03-29 17:35:18 字數 2146 閱讀 7828

1樓:帳號已登出

答:土壤分離純化真菌失敗的原因是在自然條件下,微生物常常在各種生態系統中群居雜聚。為了研究某種微生物的特性,或者大量培養和利用某一種微生物,必須事先從有關的生態環境中分離出所需的菌株,獲得純培養。

獲得純培養的方法稱為微生物的純種分離法。這一過程稱為微生物的分離純化。本文將提取泥土中所包含的微生物,並且分離、純化,最後對其微生物種類進行鑑定。

2樓:胡司令

土壤分離純化真菌失敗的原因有:沒有良好的培養基,環境不適應生物的生長,環境對生物具有選擇作用。操作有誤,需重新實驗。培養的溫度和培養時間不夠充足。

3樓:網友

土壤真菌的分離。

實驗目的:掌握從土壤中初步分離培養真菌的方法,從而獲得真菌純培養技能;瞭解基本接種技。

術。建立嚴格的無菌操作概念,掌握無菌操作技術。

實驗原理:十壤是微生物生活的大本營,是尋找和發現有重要應用潛力的微生物的主要菌源。直。

菌在十壤中的數量僅次於細菌和放線菌,主要在有機質豐富、透氣性好的偏酸性十壤中較多。分離十。

壤中的真菌並不難,但由於其菌落大,容易擴充套件,技術準確性較低。本實驗採用加有鏈毒素(或氯黴。

素、慶大黴素)和孟加拉紅的馬丁氏培養基分離及計數土壤中的真菌。在此培養基上,放線菌和細菌。

被鏈黴素和孟加拉紅所抑制,但大多數直菌能夠生存,目其菌落受孟加拉紅的抑制而較小,從而避免。

了某些直菌的擴散募延而帶來的數量上的誤差。實驗器材和材料:

1)器材:檯秤、電子秤、燒杯、試管、三角瓶、量筒、酒精燈、移液管、移液槍、1ml無菌。

吸管、無菌培養皿、接種環。

2)材料:新鮮土樣、無菌水、馬丁-孟加拉紅培養基。試驗方法和步驟: 1.培養基的製備。

1)配方: 葡萄糖蛋白腖瓊脂 20g、k2hpo4

孟加拉紅水溶液100ml、鏈黴素稀釋液100ml、自來水800ml。(2)操作步驟:

1)用搪瓷杯量取自來水500ml置小鋁鍋中,在電爐上加熱。2)按配方分別稱取各種藥品,加。

入自來水中,邊加邊攪拌,然後量取100ml1/3000孟加拉紅水溶液加入。3)加入20g浸洗過的瓊脂。

煮沸至溶化。4)總體積定容至900ml,無需調節ph值。

5)趁熱分裝於18mmx180mm試管,每管15ml,塞好棉塞,貼好標籤,裝入小鐵絲筐,並用**紙將棉基部分包好。6)高壓傑汽火案,121c火寶30min。注意:

1)取國產鏈毒素1g/瓶,用無菌吸管吸入10ml無菌水溶解,得到10%鏈黴素溶液。取該。

溶液定容於100ml滅菌容量瓶即可得到鏈毒素溶液。

2)使用前,將上述培養基熔化冷卻至55~60℃,按每10ml培養基加入鏈黴素溶。

液,即可使每毫公升培養基含30ug鏈毒素。2.土壤稀釋液的製備。

用「稀釋平板計數法」中的方法進行,將土樣稀釋至10-5。稱取土樣10g放入盛90ml無菌水的三。

角瓶中,振搖約20分鐘,使土與水充分混合,將菌分散。在無菌操作條件下,用1ml無菌移液。

為什麼土壤微生物的分離與純化菌落培養不明顯

4樓:伊人伴蝶偏起舞

1、土樣採集:取10cm左右深層土壤10g備用。

2、製備土壤稀釋液:稱取土壤1g,放入有99ml無菌水的三角瓶中,振盪均勻,即為稀釋10-2的土壤懸液。然後進行十倍梯度稀釋,依次製備-5

7 稀釋度的土壤稀釋液。 3、培養基平板製備:按培養基配方各配置牛肉膏蛋白腖瓊脂培養基、馬丁氏培養基、高氏ⅰ號培養基各100ml.

滅菌後分別倒3個平板。(高氏ⅰ號培養基滅菌前加入10滴10%苯酚;馬丁氏培養基倒平板前加入2ml去氧膽酸鈉(2%)和 1萬單位/ml鏈黴素)

4、接種:用無菌吸管吸取相應濃度土壤稀釋液,以無菌操作技術接種在平板上,塗布均勻。細菌選用-6 三個稀釋度接種於牛肉膏蛋白腖瓊脂培養基,放線菌與黴菌選用-4 三個稀釋度,分別接種於高氏ⅰ號培養基、馬丁氏培養基。

乙個稀釋度乙個平板)

5、培養:細菌平板於37℃恆溫培養1~2d,放線菌於30℃培養2~3d,黴菌於30℃培養3~5d ,觀察。

6、計數:用稀釋水樣檢測平板的菌落計數方法進行計數,報告細菌總數/(cfu·ml-1)

7、純化:挑取典型菌落接種於相應平板,培養條件同上,培養 純化。

5樓:匿名使用者

營養不足或微生物太少。

有關土壤中微生物分離與純化實驗的問題菜鳥問,勿嘲笑

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