經轉化的感受態細胞,塗完板後,還有剩餘的菌液,為什麼是放在 4度儲存,為什麼不能放在 20度

2021-03-22 01:57:13 字數 4708 閱讀 7684

1樓:匿名使用者

是4度吧。。放4度是抑制其生長。。若放在-20度,雖然經過轉化後復甦,細胞是有些恢復了活性,但是畢竟還是很脆弱,-20度冷凍細胞,然後再解凍使用的話,很容易使細胞死亡的,加之如果本來細胞的轉化效率就不是很高的話,可能再次塗板的結果是沒有菌落長出。。。

一般,我們做實驗,剩餘對的菌液是不會再用的,一是不靠譜,二是若是塗的板沒長單菌落的話,那麼這個剩餘的菌液也就沒什麼作用了:若是長出了,大可以抽提質粒,下次用時再轉,或者搖菌後用甘油保種,下次用時可選擇劃線,也可以直接搖菌。。。

個人感覺那個剩餘的菌液,不存也罷。。不知道你那邊存起來時為了???

2樓:匿名使用者

為什麼要儲存?都塗上不就完了,如果轉化率較高,不必用離心,吸取200微升塗上就行了,轉化率低的時候離一下心倒掉上清留一兩百微升塗板。一般4度短時間儲存,-20度長期儲存。

菌液反覆凍融會影響菌種活力。如果一兩天內就要用還是放4度好。

感受態細胞為什麼要放倒-80度儲存

3樓:匿名使用者

康體生命的感受態細胞都是-80度儲存的,dh5α,dh10β,stbl3,jm109,bl21(de3),top10這些都是包乾冰、包運送的,平均下來一支只要3.5

感受態細菌攝取顏色體會不會啟用

4樓:匿名使用者

不同細菌感受態製備方式相同方法一:細菌轉化的方法多以mendel和higa(1970)的發現為基礎,其基本方法是用冰預冷的cacl2或多種2價陽離子等處理細菌,使之進入感受態得以轉化。用cacl2製備新鮮或冷凍的大腸桿菌感受態細胞,常用於成批製備感受態細菌。

本法適用於大多數大腸桿菌菌株,且迅速、重複性好。操作過程簡述如下。1.從37℃培養16~20h的新鮮平板中挑取一個單菌落(如大腸桿菌dh52),或1ml新鮮的16~20h過夜培養物,轉到一個含有100mllb培養基的1l或500ml燒瓶中。

於37℃劇烈振搖培養約2~3h(旋轉搖床200~300r/min),每隔20~30min測量od600值≈0.4。2.在無菌條件下將細菌轉移到一個,用冰預冷的50ml聚丙烯離心管中,在冰上放置10~20min。

3.於4℃用sorvallgs2轉頭(或與其離心管相配的轉頭)以4000r/min離心10min,以**細胞。4.倒數培養液,將管倒置1min以使最後殘留的痕量培養液流盡。5.以10ml用冰預冷的0.

1mmcacl2重懸每份沉澱,放於冰上。6.於4℃用sorvallgs3轉頭(或與其相應的轉頭)以4000r/min離心10min,以**細胞。7.倒出培養液,將管倒置1min以使最後殘留的痕量培養液流盡。

8.每50ml初始培養物用2ml冰預冷的0.1mcacl2重懸每份沉定,此時,可以迅速將細胞分裝成小份,液氮中冰凍,-70℃貯存備用。9.用冷卻的無菌吸頭從每種感受態細胞懸液中各取200μl轉移到無菌的微量離心管中,每管加dna或連線反應混合物(體積≤10μl,dna≤50ng),輕輕旋轉以混勻內容物,在冰中放置30min。

10.將離心管放到預加溫到40℃的迴圈水浴中的試管架上,放置90s~2min,不要搖動試管。11.快速將管轉移到冰浴中,使細胞冷卻1~2min。12.每離心管加800μlsoc培養基,用水浴將培養基加溫到37℃,然後將管轉移到37℃搖床上,溫育45min使細菌復甦,並且表達質粒編碼的抗生素抗性標記基因。

13.將適當體積(每個90mm平板可達200μl)已轉化的感受態細胞轉移到含200mmol/lmgso4和相應抗生素的sob培養基上。14.將平板置於室溫至液體被吸收。15.倒置平皿,於37℃培養,12~16h後可出現菌落。

方法二:cassuperone-step***petentcellprepskit採用一種簡單便捷的方法處理大腸桿菌,使其成為感受態細胞,便於質粒dna的轉化,可滿足一般實驗的要求。與cacl2法相比具有多種優點:

使用方便,只需一步即可完成感受態細胞的製備;轉化效率略高於cacl2法,一般可達106-108cfu/μg,滿足一般實驗需要;感受態細胞製成後即可儲存於-70℃,無須加入甘油,並且經長期儲存活力無明顯下降。準備工作:1.從液氮或低溫冰箱中取出的大腸桿菌凍存菌,在lb平板上劃線,37度過夜至長出單菌落。

挑形態飽滿的單菌落2個,分別接種5mllb培養基中,37℃,250rpm,過夜培養。2.次日從5mllb培養物吸取200μl轉入50mllb培養基中(250ml錐形瓶),37℃,250rpm培養2小時,此時od600約0.4—0.

5。感受態細胞的製備:3.吸取1ml菌液到1.

5ml離心管裡,5000rpm離心5分鐘,棄去上清。4.加入100μl預冷的solutiona,懸浮菌體,冰浴30分鐘。5.此時感受態細胞已經制成可立即使用或-70℃儲存。

細胞轉化:6.在感受態細胞中加入100pg-10ngdna,混勻,冰浴30分鐘,然後42℃1分鐘熱擊,再次冰浴2分鐘。加入0.

9mllb培養基,20μlsolutionb,37℃,振盪培養1小時。7.取適當菌液(100-200μl)塗布相應抗性的平板。8.過夜培養約16個小時,數菌落數,計算轉化率。

補充說明:1.所用器具一定要清潔;2.操作步驟2中培養基的裝量也是很重要的,建議裝量不要高於此值:500ml錐形瓶裝100ml培養基,250ml錐形瓶裝50ml培養基;3.在收穫菌體前半小時還可以在培養基中加入20mm的mgcl2,效果會更好一些;4.為保證細胞處於對數生長期,培養後的菌體的od值不要高於0.

6;5.製備感受態細胞時所有操作儘量保證在冰上操作;6.細胞轉化操作步驟6中也可以不必進行熱擊,冰浴後直接加入新鮮lb,簡化操作步驟,但轉化效率低於熱擊方法,適用於對轉化率要求不高的實驗。方法三:1、取1%大腸桿菌e.

coli接種於含2mllb培養基的試管中,37℃振盪培養過夜2、取0.1ml過夜培養物轉種於含10mllb培養基的三角瓶中,37℃振盪培養3h至od600=0.3ml離心管中,冰浴10min。

4、在4℃下以4000rpm離心5min,去上清液5、把菌體懸浮於15m1冰冷的0.1mcacl2溶液中,置冰上30min6、然後再在4℃下以4000rpm離心10min,去上清液7、將菌體懸浮於0.1mlcacl2溶液中,冰浴放置4-12hr備用。

方法四:(1)將1ml過夜培養的細菌(如dh52、tg1、tm101)接種於100ml2×yt培養於500ml燒瓶。於37℃刷烈振盪,通常≥200rpm培養的細菌密度約od550=0.

2~0.5(5×107cells/ml),需2~4h。(2)將培養物放於冰上致冷10min,於4℃離心細菌培養物,10000rpm離心10min。

(3)棄除上清,將細菌懸浮於原始培養體積的一半(約50ml)的50mmcacl2和10mmtris·hcl(ph8.0)無菌冷凍液體中。(4)將細菌懸浮放在冰上約5min,然後將懸浮物於4℃10000/rpm離心10min。

(5)棄上清,懸浮細菌於原始培養體積的1/15的50mmcacl和10mmtris·hcl(ph8.0)無菌冷凍中。此時的細胞是感受態細胞,即可用於轉化。

200μl分裝於無菌的1.5ml微量離心管中,貯存於-80℃冰箱中。方法五:

tsb法(也是本人熱衷的方法)1.藥品製備1mmg2+(1mmgso4和1mmgcl2等體積混合),用0.22um濾膜超濾除菌。

tsb液(30ml/80ml菌液)(現配現用):peg33503gtryptone0.3gyeastextract0.

15gnacl0.3g2.步驟:

(1)活化菌株(2)挑單菌落培養於5ml的液笨培養基中(3)取液體培養物50ul於80ml的液體培養基中進行擴大培養(4)370c培養3-4小時,od600在0.4-0.6(5)離心,去上清(6)加入20mltsb,重懸(7)離心,去上清(8)加入10mltsb,再加入15-20%的甘油,分裝儲存注,整個操作過程均應在冰上進行。

所用藥品均需滅菌。轉化程式(1)取出200μl感受態細胞慢慢使其溶化,並立即放於冰上,加入dna或連線反應混合物,dna量通常≤50mg。用手指彈打試管10次,使之混勻,然後放在冰上40~45min。

(2)將管放於42℃水浴中2min。(3)然後每管直接加入1.0ml2×yt培養基,倒置混勻,並於37℃培養8~12h,幹浴或水浴,不需振搖。

此期間使細菌生長並開始表達抗菌素。(4)每200μl轉化混合物分別於6個2×yt瓊脂培養板上補充相應抗生素,並含有x-gal(20mg/ml)、iptg(200mg/ml)。

感受態細菌轉化後在氨苄板上培養12個小時,板上長出菌了,挑菌後搖菌

5樓:愛小腿子

實驗結果不能肯定的說明結果是成功的,做實驗的陰性對照也很重要,陰性對照必須做出陰性結果。如樓下的網友所說,可能是你的感受態菌被質粒汙染了。現在我回答一下你的 追問吧:

「未轉化質粒的感受態細胞在同樣的lb上塗板也長出單菌落」,那麼這個長出的單菌落你有沒有做菌落pcr的鑑定?如果你沒有做菌落pcr的鑑定,還有一種可能就是你的板子上的抗生素濃度不夠,導致長出了菌,這個菌到底含不含有你的目的質粒,要做pcr鑑定,不要光看菌落長出與否。建議你把板子的抗生素濃度提高,同時看看未轉化質粒的感受態細胞在同樣的lb上塗板也長出的單菌落的pcr鑑定結果,從而判斷是否僅僅是感受態被質粒汙染了

載體與插入片段連線好後 進入宿主細胞轉化 這個時候已經有了一次轉化 為什麼到後面又要轉化呢?

6樓:匿名使用者

puc19是個正control,就是一定會出clone的,如果沒有,就是操作步驟有問題

看你的protocol就是重複做一遍

這樣的話還不如一起做

塗板以後直接放37度啊

補充:根據你的說法,從「連線產物」裡面選,puc19是正control了,你挑克隆只會挑到跟原來一樣的,沒有用的

ps:「連線產物」那也是個質粒

為了提高感受態細胞的轉化率,實驗中需要考慮哪些因素

影響感受態細胞bai轉化du效率的因素及zhi實際操作過程中應注意的事dao項 1.細菌的內生長狀態 實驗中應容密切注視細菌的生長狀態和密度,儘量使用對數生長期的細胞 一般通過檢測od600來控制。dh5 菌株 od600為 0.5 時細胞密度是 5 107 ml 2.所有操作均應在無菌條件和冰上進...

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1.挑取bai少許農桿菌lba4404,接種於du5ml lb液體培養基 含50mg l str 中,28 zhi200r mim培養dao過夜。內2.取2ml培養物於 容lb液體培養基 含50mg l str 中繼續培養,直至od800 為0.5左右。3.將培養物置冰浴中30min,4 5000r...

同科生物感受態細胞製備速凍後可以存放負20度嗎

如果不具備條件,負20度短時間儲存也可以,但是時間長了細胞內部液化度較高的情況下,細胞會由於流動性的原因造成不可逆損傷。所以長時間儲存的話建議要放於負80攝氏度或者液氮中儲存。感受態細胞製備完成速凍後存放負20可以嗎 感受態細胞製備完成速凍後一般是負 80度或者液氮中凍存 如果不具備條件,負20度短...