HE染色的方法步驟及注意事項he染色的操作步驟

2021-03-07 02:05:09 字數 5303 閱讀 5376

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一、實驗步驟:

(1)樣品製備:對於貼壁生長細胞,胰酶消化,調整細胞濃度約1×105/ml,滴加於蓋玻片上(置於6孔板中),培養相應時間後,取出細胞爬片,用pbs 洗滌3次。

(2)樣品固定:95%乙醇固定20min,pbs洗滌2次,每次1min。

(3)染核:蘇木素染液染色2-3min,自來水洗滌。

(4)分色:鏡下觀察,若細胞核染色過深,用1%鹽酸酒精溶液分色數秒,自來水洗滌。

(5)染胞質:浸入伊紅染液染色1min,自來水洗滌。

(6)吹乾或自然晾幹細胞 爬片後,中性樹膠封片。

若細胞用4%多聚甲醛固定,則染色時間相應延長,蘇木素染色12-15min,伊紅5min即可。

二、注意事項:

1、染色時調節ph值很重要。如果組織塊在****中固定時間長,組織酸化而影響細胞核著色。因此,要在自來水中沖洗時間長一些或在飽和碳酸鋰水溶液中處理10-30min,這樣可以使細胞核著色較深。

染伊紅時胞漿著色不佳,可在伊紅溶液中滴加1-2滴冰醋酸。

2、切片染蘇木精後,分色這一步是關鍵,應在顯微鏡下控制進行,一般以細胞核染色清楚(晰)而細胞質基本無色為佳。如果過分延長分色時間將導致染色太淺,應重新染色後再行分色。

3、切片經酒精脫水後,入二甲苯時可出現白色不透明狀態,此為脫水不徹底,應將切片退回無水酒精,更換酒精、二甲苯,以求徹底脫水與透明。

4、在染色過程中不要讓切片乾燥,以免切片收縮、變形,影響神經元形態。

5、切片從二甲苯取出或進入二甲苯前,切片周邊均應擦乾淨或吸乾多餘水分。

6、最後封固時,要用中性樹脂,防止日後褪色,蓋片要選大於組織塊的面積,如漏出一部分不久將會褪色,所用樹脂濃度要適當,樹脂封固時不能有氣泡。

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一、細胞核染色原理:

蘇木精為鹼性天然染料,可使細胞核著色。細胞核內染色質的成分主要是dna,在dna的雙螺旋結構中,兩條核苷酸鏈上的磷酸基向外。

使dna雙螺旋的外側帶負電荷,呈酸性,很容易與帶正電荷的蘇木精鹼性燃料以離子鍵或氫鍵結合而被染色。蘇木精在鹼性溶液中呈藍色,所以細胞核被染成藍色。

二、細胞漿染色原理:

細胞漿內主要成分是蛋白質,為兩性化合物、細胞漿的染色與ph值有密切關係,當ph調到蛋白質等電點4.7-5.0時,胞漿對外不顯電性,此時酸或鹼性染料不易染色。

當ph調到6.7-6.8時,大於蛋白質的等電點ph值,表現酸性電離,而帶負電荷的陰離子,可被帶正電荷的染料染色,現時胞核也被染色,核和胞漿難以區分。

因此必須把ph調至胞漿等電點以下,在染液中加入醋酸使胞漿帶正電荷(陽離子),就可被帶負電荷(陰離子)的染料染色。

伊紅y是一種化學合成的酸性染料,在水中離解成帶負電荷的陰離子,與蛋白質的氨基正電荷(陽離子)結合而使細胞漿染色,細胞漿、紅細胞、肌肉、結締組織,嗜伊紅顆料等被感染成不同程度的紅色或粉紅色,與藍色的細胞核形成鮮明的對比。

2樓:南京金益柏生物科技****

zt一 取材和固定

取材後經固定24小時(4%pa灌注取材的後固定6~8小時)以後,流水沖洗24小時,置於70%~80%乙醇中,可長期儲存。

二 脫水和包埋

1、95%alc(二道) ⅰ 2~4h

ⅱ 2h

2、無水alc(二道) ⅰ 1.5h

ⅱ 1h

3、二甲苯+無水乙醇(1:1) 20min

4、二甲苯(二道) ⅰ 10min

(注:脫水透明esp.透明時間可適當延長) ⅱ 10min

5、浸軟蠟(50~52℃)(二道) ⅰ 30min

ⅱ 1h

6、浸硬蠟(58~60℃)(二道) ⅰ 30min

ⅱ 30min

7、包埋:注意溫度、切面。

三 切片

修、切、展、貼、烤(烤片55~60℃) 3~10h

四 he染色

1、二甲苯脫蠟 五道,每道5~10分鐘

2、無水乙醇 ⅰ 5min

ⅱ 5min

3、95%乙醇 ⅰ 5min

ⅱ 5mn

4、80%乙醇 5min

5、70%乙醇 5min

6、d.w. 3~5min

7、harris蘇木素液 5min(冬天可適當延長,eg.20min)

8、水洗

9、0.5%鹽酸酒精分色 3~10seconds,鏡下觀察

10、水洗藍化 15~30min(注意換水)

11、70%乙醇 5min

12、80%乙醇 5min

13、伊紅液(95%乙醇溶液) 3~30seconds

14、95%乙醇 ⅰ 1min

ⅱ 5min

15、無水乙醇 ⅰ 5min

ⅱ 5min

16、二甲苯+乙醇(1:1) 5min

17、二甲苯 ⅰ 5min

ⅱ 5min

ⅲ 5min

18、中性樹膠封片。

he染色注意事項:

1. 染色時調節ph值很重要。如果組織塊在****中固定時間長,組織酸化而影響細胞核著色。

因此,要在自來水中沖洗時間長一些或在飽和碳酸鋰水溶液中處理10-30min,這樣可以使細胞核著色較深。染伊紅時胞漿著色不佳,可在伊紅溶液中滴加1-2滴冰醋酸。

2. 切片染蘇木精後,分色這一步是關鍵,應在顯微鏡下控制進行,一般以細胞核染色清楚(晰)而細胞質基本無色為佳。如果過分延長分色時間將導致染色太淺,應重新染色後再行分色。

3. 切片經酒精脫水後,入二甲苯時可出現白色不透明狀態,此為脫水不徹底,應將切片退回無水酒精,更換酒精、二甲苯,以求徹底脫水與透明。

4. 在染色過程中不要讓切片乾燥,以免切片收縮、變形,影響神經元形態。

5. 切片從二甲苯取出或進入二甲苯前,切片周邊均應擦乾淨或吸乾多餘水分。

6. 最後封固時,要用中性樹脂,防止日後褪色,蓋片要選大於組織塊的面積,如漏出一部分不久將會褪色,所用樹脂濃度要適當,樹脂封固時不能有氣泡。

蘇木精—伊紅染色法簡稱he染色法,它是最常用的普通染色方法。蘇木精(hematoxylin)是陽離子染料,將細胞核內的嗜鹼性物質染成藍紫色。伊紅(eosin)是陰離子染料,將細胞質和膠原纖維等染成粉紅色。

3樓:tcoo_阿西

he染色步驟:

1、脫蠟,脫蠟二甲苯ⅰ、ⅱ各10分鐘,事先準備好蓋玻片。

2、覆水,100%(ⅰ、ⅱ)、90%、80%、70%酒精各5分鐘,自來水沖洗5分鐘×3。

3.、蘇木精染色5分鐘,根據染色情況,可以適當增加或減少染色時間,流水沖洗。

4、5%乙酸分化1分鐘,流水沖洗,用吸管滴加乙酸,佈滿玻片上的組織即可,分化後顏色變淺了一些,成為藍色。

5、返藍:返藍液,實驗室沒有,也可不用。

6、伊紅染色1分鐘,根據染色情況,可以適當增加或減少染色時間,流水沖洗。

7、脫水:70%、80%、90%、100%酒精各10秒,二甲苯1分鐘,可以在通風櫥自然晾乾再封

片,約5分鐘左右。

8、滴上中性樹膠,封片,用吸管滴上一滴即可,儘量少滴,但壓片後要將組織全部覆蓋完,避免中間有氣泡。

he染色的操作步驟

4樓:tcoo_阿西

he染色步驟:

1、脫蠟,脫蠟二甲苯ⅰ、ⅱ各10分鐘,事先準備好蓋玻片。

2、覆水,100%(ⅰ、ⅱ)、90%、80%、70%酒精各5分鐘,自來水沖洗5分鐘×3。

3.、蘇木精染色5分鐘,根據染色情況,可以適當增加或減少染色時間,流水沖洗。

4、5%乙酸分化1分鐘,流水沖洗,用吸管滴加乙酸,佈滿玻片上的組織即可,分化後顏色變淺了一些,成為藍色。

5、返藍:返藍液,實驗室沒有,也可不用。

6、伊紅染色1分鐘,根據染色情況,可以適當增加或減少染色時間,流水沖洗。

7、脫水:70%、80%、90%、100%酒精各10秒,二甲苯1分鐘,可以在通風櫥自然晾乾再封

片,約5分鐘左右。

8、滴上中性樹膠,封片,用吸管滴上一滴即可,儘量少滴,但壓片後要將組織全部覆蓋完,避免中間有氣泡。

5樓:筱曉小魚兒

將石蠟切片置於烘箱中60℃烤1~2h;

石蠟切片常規二甲苯,乙醇脫蠟至水,

蘇木素染10分鐘,

流水沖洗,去餘色,

0.7%鹽酸乙醇分化數秒鐘,

流水沖洗,切片變藍約15分鐘,

7.95%乙醇30秒鐘,

8.酒精性伊紅染30秒,

i 95%乙醇30秒鐘,

ii 95%乙醇30秒鐘,

i 100%乙醇30秒鐘,

ii100%乙醇30秒鐘,

石碳酸二甲苯30秒鐘,(1: 4石碳酸1-二甲苯4)i二甲苯30秒鐘,

ii二甲苯30秒鐘,

中性樹膠封片。

he染色操作流程:

he染色,即是蘇木精-伊紅染色法,是形態學最常用的染色方法,在質量較佳的he染色切片上,各種組織或細胞的一般形態結特點都可以觀察到。蘇木精染液為鹼性,主要使細胞核內的染色質與胞質內的核糖體著紫藍色;伊紅為酸性染料,主要使細胞質和細胞外基質中的成分著紅色。

6樓:北京索萊寶科技****

【試劑材料]】

1.試劑:0.5%醇溶性伊紅染液,改良的哈瑞(harris)蘇木素,0.5%鹽酸酒精溶液

1.1 伊紅:

配製方法:中性紅 0.5g,80%酒精100ml,將伊紅溶於酒精內攪拌,全部溶解後即可使用。

1.2蘇木精:

配製方法:a液: 蘇木素1g,無水酒精10ml

b液:硫酸鋁鉀20g,蒸餾水200ml

兩液分別溶解後混合,加熱煮沸後,慢慢加入紅色氧化汞0.5g,此時有大量氣泡產生,故容器要大,以防液體溢位,然後將染液迅速冷卻,冷卻後過濾,並每100ml加入冰醋酸6ml,甘油10ml。

1.3 0.7%鹽酸酒精溶液

配製方法:鹽酸0.7ml,70%酒精100ml

2.材料:石蠟切片

[操作流程]

1.將石蠟切片置於烘箱中60℃烤1~2h;

2.石蠟切片常規二甲苯,乙醇脫蠟至水,

3.蘇木素染10分鐘,

4.流水沖洗,去餘色,5.0.7%鹽酸乙醇分化數秒鐘,

6.流水沖洗,切片變藍約15分鐘,

7.95%乙醇30秒鐘,

8.酒精性伊紅染30秒,

9.i 95%乙醇30秒鐘,

10.ii 95%乙醇30秒鐘,

11.i 100%乙醇30秒鐘,

12.ii100%乙醇30秒鐘,

13.石碳酸二甲苯30秒鐘,(1: 4石碳酸1-二甲苯4)

14.i二甲苯30秒鐘,

15.ii二甲苯30秒鐘,

16.中性樹膠封片。

[實驗結果]: 鏡下觀察細胞核呈藍色;細胞漿一般呈紅色;膠原纖維呈不同程度的紅色,紅細胞呈亮紅色;

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